| ||
| Akkreditoitu menetelmä | ||
IndikaatiotInfektiot, joissa aiheuttajiksi on aihetta epäillä anaerobisia bakteereita, yksin tai aerobisesti kasvavien bakteerien ohella. Tavallisimpia tällaisia ovat leikkaushaavat ja muut syvät haavat, krooniset infektiot ja abskessit. Nestemäisistä näytteistä on hyvä tehdä myös värjäys (-BaktVr, KL 1159), joka helpottaa ja nopeuttaa viljelyvastausta. | ||
NäyteastiaBakteerikuljetusputki (esim. eSwab tai Amies) | ||
NäyteLähetetiedoista tulee ilmetä, onko näyte otettu steriilisti punktoimalla vai onko kontaminoitumisen mahdollisuus (esim. ihon normaalimikrobistolla) olemassa. Lähetetietojen tulee sisältää näytetyyppi ja näytteenottokohta mahdollisimman tarkasti, kliiniset tiedot, haavan syntytapa sekä bakteerilääkitys.Syvämärkänäytteet otetaan pääsääntöisesti punktoimalla. Tällaisia näytteenottokohtia ovat mm. poskiontelo, abskessi, vatsaontelo, fisteli, Bartholinin rauhanen, pleuraontelo ja nivelneste. Punktoitu näyte siirretään nestemäiseen kuljetusputkeen (kuten eSwab) tai tavalliseen bakteerikuljetusputkeen. Mikäli punktointi ei ole mahdollista tai saanto on vähäinen, märkänäyte otetaan dacrontikkuun imeyttämällä. Kudospala: Steriiliin tai tehdaspuhtaaseen näytepurkkiin, johon voidaan lisätä vähän steriiliä keittosuolaliuosta kuivumisen ehkäisemiseksi. Pieni kudospala voidaan lähettää myös kuljetusputkessa. Haavanäyte: Näyte otetaan syvältä, ei arpeutuvasta leesiosta. Märkä sekä mahdollinen nekroottinen kudos poistetaan ja haava-alue puhdistetaan huolella fysiologisella keittosuolaliuoksella. Näyte otetaan dacrontikulla hankaamalla haavan pohjasta. Näytetikku työnnetään kuljetusputkeen. Mikäli mahdollista, otetaan myös haavanäytteet punktoimalla. Tuoreiden puremahaavojen viljely ei ole hyödyllistä. Viljely kannattaa ottaa vain, jos puremahaavat tulehtuvat. Välikorva: Kroonisista tulehduksista näyte otetaan tärykalvopiston yhteydessä imulla imukärkeen tai ruiskuun. Akuuteissa infektioissa riittää aerobiviljely (Pu-BaktVi2, KL 3492). Katetri, kanyyli, kierukka: Katetria tai kanyylia poistettaessa ympäröivä iho puhdistetaan 80 % etanolilla. Poisto tehdään aseptisesti. Katetrista riittää näytteeksi noin 5 cm mittainen pala ja kanyylistä se osa, joka on ollut suonen sisällä. Katetri, kanyyli tai kierukka työnnetään kuljetusputkeen geelin sisään siten, että pieni osa jää näkyviin. | ||
Näytteen säilytysNäytteet säilytetään jääkaapissa ennen kuljetusta. Näytteet säilyvät jääkaappilämpötilassa 2 vrk. | ||
Näytteen lähetysSuosittelemme kylmäkuljetusta. Ympäristölämpötilassa kuljetettaessa näytteet on pakattava siten, että äärilämpötiloilta vältytään. Bakteeriviljelynäytteet eivät kestä jäätymistä ja lämpötilan noustessa yli huoneenlämpötilan näytteiden säilyvyys heikkenee merkittävästi. | ||
MenetelmäAerobinen ja anaerobinen bakteeriviljely näytteen laadun mukaan valituille elatusaineille. Rikastusviljely nestemäiseen elatusaineeseen (n. 1 viikko) | ||
TekotiheysViljellään arkipäivisin ma-la. Rikastusviljely (kasvatusaika 1 viikko) saattaa tuottaa lisälöydöksen, joka ilmoitetaan lisävastauksella. Lisävastukset myös soitetaan. | ||
Vastausaika3Mahdolliset jatkotutkimukset voivat pidentää tutkimuksen kestoa. Selvästi tärkeät ja hoidon tarkennuksen kannalta merkittävät löydökset pyritään vastaamaan alustavasti. | ||
TulkintaMerkitsevät patogeenit nimetään ja antibioottiherkkyys tehdään harkinnan mukaan. | ||
VirhelähteetKontaminaatio normaaliflooralla. Liian pitkä viive näytteenotosta viljelyyn ja näytteen sälytys huoneenlämmössä. Osa anaerobeista on erittäin herkkiä näytteen hapettumiselle. Mikrobilääkitys. | ||
TekopaikkaSYNLAB HelsinkiAkkreditointitaho: FINAS (EA, ILAC ja IAF jäsen) Standardi: SFS-EN ISO 15189 | ||
TiedustelutAmmattilaisneuvontaammattilaisneuvonta@synlab.fi |